| | 單細(xì)胞全基因組測序技術(shù)是在單細(xì)胞水平對全基因組進(jìn)行擴(kuò)增與測序的一項(xiàng)技術(shù),其原理是對分離的單個細(xì)胞的微量全基因組DNA進(jìn)行擴(kuò)增,獲得高覆蓋率的完整的基因組后進(jìn)行高通量測序,廣泛應(yīng)用于癌癥研究、胚胎發(fā)育、輔助生殖、細(xì)胞分化、免疫機(jī)制、微生物等方向的研究。 獲得高覆蓋度高保真性的全基因組擴(kuò)增產(chǎn)物是準(zhǔn)確全面的測序結(jié)果的保障。為了保證基因組高覆蓋度無偏好性的擴(kuò)增,在單細(xì)胞測序技術(shù)誕生的近二十年時間里,全基因組擴(kuò)增技術(shù)經(jīng)歷了幾次重大的變革,WGA主要有三種方式:DOP-PCR,MDA,MALBAC。下面小編就來為大家介紹一下WGA技術(shù)的演變歷程,以及怎樣根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪x擇相應(yīng)的擴(kuò)增方式。 | | DOP-PCR (Degenerate Oligonucleotide–Primed Polymerase Chain Reaction) | | 技術(shù)原理:簡并寡核苷酸引物PCR,引物的3' 含6bp的隨機(jī)序列,可以隨機(jī)的和基因組DNA結(jié)合,從而實(shí)現(xiàn)對全基因組的擴(kuò)增[1]。 應(yīng)用范圍:因?yàn)镻CR的指數(shù)擴(kuò)增特性,放大了基因組上不同序列之間的差異,因而導(dǎo)致擴(kuò)增出的基因組覆蓋度較低。盡管如此,在1M bin size的水平上,DOP-PCR適合對染色體的CNV進(jìn)行定量。 商品化試劑盒:Sigma-Aldrich, GenomePlex Single Cell Whole Genome Amplification Kit。 圖1 DOP-PCR技術(shù)原理[4] | | MDA (Multiple Displacement Amplification) | | 技術(shù)原理:2001年由Laskin團(tuán)隊(duì)發(fā)明,使用隨機(jī)的六聚體引物和φ29DNA聚合酶進(jìn)行反應(yīng),該聚合酶具有很強(qiáng)的鏈置換特性,能夠在等溫的條件下,擴(kuò)增產(chǎn)生50~100kb的核酸片段。同時由于其3’-5’核酸外切酶活性和校對活性,φ29 DNA聚合酶具有很高的復(fù)制保真性[2]。 應(yīng)用范圍:MDA法比DOP-PCR擁有更高的基因組覆蓋度,φ29 DNA聚合酶的高效率及高保真性,使得MDA法在對SNV的分析,以及構(gòu)建大片段文庫上有著顯著優(yōu)勢。但是,和DOP-PCR相同,MDA法依然是指數(shù)擴(kuò)增,因此依然存在PCR反應(yīng)的序列偏好性,然而,和DOP-PCR不同的是,這種偏好性并不能重復(fù),因此MDA法不適合進(jìn)行CNV的分析。 商品化試劑盒:Qiagen, REPLI-g Single Cell Kit。 圖2 MDA技術(shù)原理[4] | MALBAC (Multiple Annealing and Looping–Based Amplification Cycles) | | 技術(shù)原理:2012年由謝曉亮團(tuán)隊(duì)發(fā)明,擬線性的擴(kuò)增過程降低了指數(shù)擴(kuò)增的序列偏好性。擴(kuò)增引物的5’含有27bp的共同序列,3’是8bp的隨機(jī)序列,可以和模板在15~20℃的低溫下結(jié)合,經(jīng)過8~12個循環(huán)的擬線性擴(kuò)增后,再對這些環(huán)狀的擴(kuò)增子進(jìn)行指數(shù)擴(kuò)增[3]。 應(yīng)用范圍:MALBAC法的優(yōu)勢在于,雖然它依然存在一定的序列偏好性,但和MDA不同,MALBAC的這種偏好性在不同的細(xì)胞之間是可重復(fù)的,因此可以通過對參考細(xì)胞標(biāo)準(zhǔn)化后,進(jìn)行CNV的分析;另外,由于其擴(kuò)增的均一性,MALBAC法擴(kuò)增的等位基因敲除率更低。MALBAC的弱點(diǎn)在于,它使用的聚合酶保真性不如φ29,因此MALBAC在檢測SNV時將會出現(xiàn)更多的假陽性;另外,由于它可重復(fù)性的序列偏好性,基因組上低擴(kuò)增的區(qū)域有時會在擴(kuò)增過程中丟失。 商品化試劑盒:Yikon, Single Cell Whole Genome Amplification Kit. 圖3 MALBAC技術(shù)原理[4] 由上述的分析可見,MDA和MALBAC各有優(yōu)劣,實(shí)際上在不同的文獻(xiàn)中,研究者也會根據(jù)研究目的的不同,采取不同的方式對基因組進(jìn)行擴(kuò)增,以滿足研究的需要[5-7] | picoplex特殊隨機(jī)引物起始的熱循環(huán)擴(kuò)增 | | | picoplex技術(shù)相比于以往的PCR、MDA、MALBAC為基礎(chǔ)的單細(xì)胞全基因組擴(kuò)增技術(shù),操作簡便,擴(kuò)增重復(fù)性良好。特別設(shè)計(jì)的隨機(jī)引物(參加US patent 8,206,913)能減少引物二聚體的形成,從而提高引物和模板的配對效率。 [1] Tenius H, Carter NP, Bebb CE, et al. Degenerate oligonucleotide-primed PCR: general amplification of target DNA by a single degenerate primer[J]. Genomics, 1992,13(3): 718-725. [2] Dean FB, Nelson JR, Giesler TL, et al. Rapid amplification of plasmid and phage DNA using Phi 29 DNA polymerase and multiply-primed rolling circle amplification[J]. Genome Research, 2001, 11(6): 1095-1099. [3] Zong C, Lu S, Chapman AR, et al. Genome-wide detection of single-nucleotide and copy-number variations of a single human cell[J]. Science, 2012, 338(6114): 1622-1626. [4] Lei H, Fei M, Chapman A, et al. Single-cell whole-genome amplification and sequencing: methodology and applications[J]. Annual Review of Genomics & Human Genetics, 2015, 16(1). [5] Wang Y, Waters J, Leung ML, et al. Clonal evolution in breast cancer revealed by single nucleus genome sequencing[J]. Nature, 2014, 512(7513): 155-160. [6] Ni X, Zhuo M, Su Z, et al. Reproducible copy number variation patterns among single circulating tumor cells of lung cancer patients[J]. PNAS, 2013, 110(52): 21083-21088. [7] Gawad C, Koh W, Quake S R. Single-cell genome sequencing: current state of the scienc.[J]. Nature Reviews Genetics, 2016. 華雅思創(chuàng)Rubicon授權(quán)代理,正品現(xiàn)貨,產(chǎn)品信息如下: PicoPLEX® WGA Kit:用于單細(xì)胞文庫構(gòu)建的全基因組擴(kuò)增解決方案 PicoPLEX® DNA-seq Kit:單細(xì)胞 DNA 文庫制備技術(shù),適用于 Illumina 所有 NGS 測序平臺 ThurPLEX® DNA-seq Kit:更高的通量, 更好的性能, 用于所有 Illumina 的 NGS 平臺 品牌/生產(chǎn)廠家 產(chǎn)品編號 產(chǎn)品名稱 單位 Rubicon Genomics R300381 PicoPLEX DNA-seq Kit 48 Rubicon Genomics R300672 SMARTer® PicoPLEX® Single Cell WGA Kit 96 Rubicon Genomics R300722 PicoPLEX Single Cell WGA Kit v3 96 Rubicon Genomics R400407 ThruPLEX DNA-seq 96D Kit 96 |
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